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免疫組化中常見問題

2011年06月22日 10:36:00人氣:11092來源:上海玉博生物科技有限公司

 

1、石蠟切片和冰凍切片的比較?
1)要求做冰凍切片的不一定能做石蠟切片。因為作石蠟切片時要高溫烤片,可能會破壞組織的抗原性,如果組織的抗原性較穩定,則可作石蠟切片;但是要求做石蠟切片的,可作冰凍切片。

2)冰凍切片的優點是能夠較好的保存組織的抗原免疫活性,做免疫組化時不需抗原修復這一步。缺點是細胞內易形成冰晶而破壞細胞結構,可能會使抗原彌散;切片厚度較石蠟的厚,做的片子沒石蠟的漂亮。當你買一抗時,目錄上都寫著做什么樣的切片,如果它寫著只能做冰凍,就不能做石蠟,如寫著兩者都可,那就都能做。
3)石蠟切片的優點可以保持組織細胞的形態結構,且容易存放在室溫,而冰凍切片比較麻煩,一定要存在-80度的低溫冰箱中,尤其是用來做原位雜交的的切片,為了防止RNA降解,保存一貫很重要。由于石蠟切片可以切到4微米左右,所以原位雜交探針容易滲透到組織中去,容易成功,而且得到的顏色/形態都較冰凍切片好。
2、一抗的選擇要點和技巧是什么?
1)單克隆和多克隆抗體的選擇。由一種克隆產生的特異性抗體叫做單克隆抗體。單克隆抗體能目標明確地與單一的特異抗原決定簇結合,就像導彈地命中目標一樣。另一方面,即使是同一個抗原決定簇,在機體內也可以由好幾種克隆來產生抗體,形成好幾種單克隆抗體混雜物,稱為多克隆抗體。在抗原抗體反應中,一般單克隆抗體特異性強,但親和力相對小,檢測抗原靈敏度相對就低;而多克隆抗體特異性稍弱,但抗體的親和力強,靈敏度高,但易出現非特異性染色(可以通過封閉等避免)。

2)應用范圍的選擇。有的一抗只能用于Western blotting,或免疫組化、免疫熒光、免疫沉淀等;甚至表明石蠟切片或冰凍切片。
3)種屬反應性的選擇(species reactivity)。這一點很重要,表明這種抗體可能存在種屬差異,且這種抗體適合檢測哪種種屬動物體內的抗原。
4)種屬來源,一般兔來源的多是多克隆;而小鼠來源的多是單克隆,但也有另外。根據此來源來選擇相應的二抗。
3、在什么情況下使用TritonX-100
1Triton X-100化學名稱為聚乙二醇辛基苯基醚,是一種去污劑。在免疫組織化學(>10um厚切片和免疫細胞化學中一般用Triton X-100 作為細胞通透劑,在膜上打孔。
2)其作用原理:Triton X-100 可以溶解細胞膜、細胞核膜、細胞器膜上的脂質而使抗體及大分子結構的物質進入胞漿和胞核內,故在細胞免疫組化時尤為推薦使用,這樣抗體就能順利進入胞內與相應抗原結合。
3Triton X-100既是一種表面活性劑,也有抗氧化作用,
 4、封閉血清的選擇原則是什么?
1)膜上或切片上有剩余的位點可以非特異性吸附抗體,造成后續結果的假陽性!

2)封閉血清一般是和二抗同一來源的,血清中動物自身的抗體,預先能和組織中有交叉反應的位點發生結合,否則在后面的步驟中如果和二抗發生結合,會造成背景。

3)也可以用小牛血清、BSA、羊血清等,但不能與一抗來源一致。
5
、抗體孵育條件的比較?
1)一抗孵育溫度有幾種:4度、室溫、37度,其中4度效果*;孵育時間:這與溫度、抗體濃度有關,一般371-2h,而4度過夜和從冰箱拿出后37度復溫45min

2)二抗一般室溫或3730min-1h,具體時間需要摸索。
6、一抗4度孵育后為什么要進行37度復溫?
一種說法是防止切片從4度直接放入PBS易脫片;另外一種觀點是使抗原抗體結合更穩定。一般不需要,但對表達較弱的抗原可能有用,4度和37度時分子運動方式不同,前者分子碰撞機率和運動速度小于后者,后者結合更快,但敏感性也提高了并易造成非特異染色。我更贊同后一種說法,因為我嘗試把肝臟或睪丸片子從4度過夜拿出后,直接用PBS洗沒發生過脫片現象。
7DAB顯色時間如何把握?
1DAB顯色時間不是固定的,主要由顯微鏡下控制顯色時間,到出現淺棕色本底時即可沖洗;

2DAB顯色時間很短(如幾秒或幾十秒)就出現很深的棕褐色,這很可能說明你的抗體濃度過高或抗體孵育時間過長,需要下調抗體濃度或縮短你的抗體孵育時間;

3)此外,若很短時間就出現背景很深,還有可能你前面的封閉非特異性蛋白不全,需要延長封閉時間;

4DAB顯色時間很長(如超過十幾分鐘)才出現陽性染色,一方面可能說明你的抗體濃度過低或孵育時間過短(一抗4度過夜);另一方面就是封閉時間過長。
8、免疫組化結果如何分析?
1)陽性著色細胞計數法。在40*光鏡下,隨機選擇不重疊的10個視野,人工或機器計數陽性著色細胞,每組3~6張不同動物組織切片,然后進行組間比較即可。

2)灰密度分析法。通過在不同組別和不同動物組織切片上選擇相同區域、相同條件下用image j進行灰密度分析,然后進行統計分析即可。
3)評分法。通過在光學顯微鏡下對組織切片分別按染色程度(0~3分為陰性著色、淡黃色、淺褐色、深褐色)、陽性范圍進行評分(1~4分為0~25%26~50%51~75%76~*),zui終可以分數相加,再進行比較。對于以上這幾種方法,各有利弊,請細心選擇。要想得到正確結果的前提是你要做出著色均勻、背景很淺的高質量切片。
9、在什么情況下進行組織抗原修復,抗原修復的條件是什么?
1)由于組織中部分抗原在甲醛或多聚甲醛固定過程中,發生了蛋白之間交聯及醛基的封閉作用,從而失去抗原性。通過抗原修復,使得細胞內抗原決定族重新暴露,提高抗原檢測率。

2)修復方法從強到弱一般分為三種,高壓修復、微波修復、胰酶修復。修復液也分為若干種(具體的可以查閱相關資料,大量的:中性的、高pH的等)。
3)微波修復,我們一般用6min*4次,效果不錯。
10、內源性過氧化物酶的滅活時間和濃度是什么?
1)一般3%過氧化氫滅活時間短點,可以10min左右;而0.3%過氧化氫則可以適當延長封閉時間,一般10~30min

2)用配置過氧化氫比雙蒸水或PBS可能好在保護抗原和固定組織作用,過氧化氫孵育時間過長易引起脫片.
3)現用現配,配好后4度避光保存。
 
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